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酪氨酸酶:从酶学性质到抑制剂筛选的全面解析

2026-07-29

酪氨酸酶:

从酶学性质

抑制剂筛选的全面解析

---SOLARBIO---

酪氨酸酶(Tyrosinase,EC1.14.18.1)在美白、治疗色素沉着性疾病、果蔬保鲜等领域,一直是研究的热门靶点,最近研究发现酪氨酸酶甚至在神经退行性疾病(如帕金森病)中扮演重要角色。作为黑色素合成的关键限速酶,其活性调控机制、体外检测方法以及抑制剂筛选模型的建立都至关重要。本文系统梳理酪氨酸酶的分子结构、催化机制、活性检测方法以及抑制剂筛选策略。

一、酪氨酸酶:

黑色素合成的“限速引擎”

酪氨酸酶是一种含铜离子的多酚氧化酶,属于I型跨膜糖蛋白,在黑色素细胞的黑素小体膜上定位。

01

结构与活性中心

酪氨酸酶的活性中心由两个保守的铜离子结合位点(CuA和CuB)构成,每个铜离子与组氨酸残基配位。两个铜离子在氧分子的参与下,共同构成催化氧化反应的活性中心。

(1)氧化态(Eoxy):与O?结合,催化羟基化反应

(2)还原态(Emet):参与后续的氧化反应

02

催化双重反应

(1)单酚酶活性(Monophenolase):催化酪氨酸羟化为多巴(L-DOPA)

(2)二酚酶活性(Diphenolase):催化多巴进一步氧化为多巴醌

多巴醌随后通过非酶促反应或由TRP1、TRP2等酶催化,最终生成真黑色素或褐黑色素。

TYR,tyrosinase,酪氨酸酶; TRP,tyrosinase related protein,酪氨酸酶相关蛋白; Dopa,多巴,3,4-二羟基苯丙氨酸; DHICA,5,6-二羟基吲哚-2-羧酸; DHI,5,6-二羟基哚哚; ICAQ,吲哚-2-羧酸-5,6-醌; IQ,吲哚-5,6-二酮; HBTA,5-羟基-1,4-苯并噻嗪丙氨酸。(Chang TS., 2009)

03

酪氨酸酶的表达与分布

酪氨酸酶广泛存在于微生物、植物、无脊椎及脊椎动物中,不同来源的酶在结构、底物特异性和表达水平上存在显著差异。

哺乳动物

主要表达于黑色素细胞的黑素小体内,由TYR基因编码,为I型跨膜糖蛋白。人、小鼠等哺乳动物的酪氨酸酶与蘑菇酶在糖基化模式、最适pH及底物亲和力(对L-酪氨酸 vs L-多巴)上均有差异,因此蘑菇酶虽常用于高通量筛选,但候选抑制剂需经哺乳动物酶验证。

蘑菇(如双孢蘑菇)

是商品化酪氨酸酶的主要来源,因含量高、易提取、活性稳定而被广泛用作体外筛选模型。蘑菇酶为胞内可溶性蛋白,无需膜蛋白纯化步骤,成本低廉。

植物

在部分水果(如苹果、香蕉、马铃薯)中参与褐变反应,其表达受机械损伤、病原侵染等诱导,是食品保鲜研究的重要靶点。

昆虫

酪氨酸酶在昆虫体内参与表皮黑化、伤口愈合及免疫防御,与昆虫的酚氧化酶(PO)同源,是开发新型生物农药的潜在靶点。

二、酪氨酸酶抑制剂:

黑色素合成的“刹车系统”

酪氨酸酶抑制剂通过干扰酶的催化活性或降低其表达水平,从而减少黑色素生成。根据作用机制与化学结构,可将其分为竞争性抑制剂、非竞争性抑制剂及混合型抑制剂等类型。

01. 按作用机制分类如下表:

抑制类型

作用特点

代表化合物

结合位点

竞争性

抑制

与底物(L-酪氨酸/L-多巴)竞争酶活性中心,增加Km,Vmax不变

曲酸、熊果苷、苯乙基间苯-二酚

铜离子

活性中心

非竞争性

抑制

结合于酶的非活性中心位点,Km不变,降低Vmax

部分黄酮类

(如槲皮素)、鞣花酸

酶表面

变构位点

混合型

抑制

同时影响Km和Vmax,兼具竞争与非竞争特性

绿茶多酚

(EGCG)、

白藜芦醇

活性中心与

变构位点兼有

不可逆

抑制

与铜离子共价结合或使酶失活

硫-脲类、

苯硫-脲

铜离子螯合

或蛋白修饰

02. 酪氨酸酶抑制剂的筛选

在酪氨酸酶抑制剂筛选、酶动力学研究以及产品功效评价中,建立稳定、灵敏、可重复的酶活性检测体系是基础。

2.1 底物检测原理

L-酪氨酸在酪氨酸酶的作用下生成多巴,多巴经酪氨酸酶催化生成多巴醌,多巴醌在475nm处有吸收峰,加入酪氨酸酶抑制剂后可以抑制多巴醌的生成,据此可以计算出酪氨酸酶抑制率。

2.2 实验体系建立要点

pH值:酪氨酸酶最适pH一般在6.8左右,pH偏离会导致酶活显著下降;

温度:最适温度约25-37℃,过高温度易导致酶失活;

酶浓度与底物浓度:需提前做预实验确定线性反应区间,避免底物饱和或酶过量导致的动力学失真。

03. 抑制剂筛选策略:从初筛到机制验证

3.1 酶活抑制率测定

采用96孔板高通量模式,设置不同浓度待测物,计算IC??值。同步设置阳性对照(如曲酸、熊果苷、苯乙基间苯-二酚等已知抑制剂),以评估体系的可靠性。

3.2 机制研究:酶动力学分析

通过改变底物浓度或酶浓度,测定不同抑制剂浓度下的反应速率,绘制LineweaverBurk双倒数图,判断抑制类型:

(1)竞争性抑制:抑制剂与底物竞争酶活性中心(如熊果苷),表现为K_m增大,V_max不变。

(2)非竞争性抑制:抑制剂结合于酶的非活性中心位点(如部分多酚类化合物),表现为K_m不变,V_max减小。

(3)混合型抑制:兼具两种特性,K_m增大,V_max减小。

三、酪氨酸酶和酪氨酸酶

抑制剂的应用领域以及研究方向

1、化妆品美白,皮肤医学黄褐斑、雀斑、炎症后色素沉着等疾病的治疗药物开发;

2、食品保鲜抑制果蔬(如蘑菇、马铃薯、苹果)的酶促褐变,延长货架期;

3、生物农药针对昆虫酪氨酸酶(参与虫体黑化及免疫)的杀虫剂设计;

4、生物传感器基于酪氨酸酶的电化学传感器,用于酚类污染物检测;

5、其他新兴方向:酪氨酸酶在神经退行性疾病(如帕金森病)中参与神经黑色素生成;在合成生物学中用于构建色素生产途径。(Nagatsu, Toshiharu et al., 2022)

酪氨酸酶作为黑色素合成的核心酶,其活性调控机制、检测方法及抑制剂筛选模型的建立,是色素相关产品研发的基石。在抑制剂的研发实践中,需综合考虑提取方法、检测体系、抑制机制等多维度因素,才能筛选出兼具高效性与安全性的候选分子。

结合前文蛋白酶的分类与应用,

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漆酶活性检测试剂盒

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酪氨酸酶(Try)活性检测试剂盒升级版

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参考文献

[1] Chang TS. An updated review of tyrosinase inhibitors. Int J Mol Sci. 2009;10(6):2440-2475. Published 2009 May 26. doi:10.3390/ijms10062440

[2] Nagatsu, Toshiharu et al. “Neuromelanin in Parkinson's Disease: Tyrosine Hydroxylase and Tyrosinase.” International journal of molecular sciences vol. 23,8 4176. 10 Apr. 2022, doi:10.3390/ijms23084176

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